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細(xì)胞培養(yǎng)需注意事項(xiàng)

2018-06-27 瀏覽次數(shù):2670

細(xì)胞培養(yǎng)需注意事項(xiàng)

細(xì)胞培養(yǎng)在生命科研的地位舉足輕重。實(shí)驗(yàn)君的很多成果可謂是成也細(xì)胞培養(yǎng),敗也細(xì)胞培養(yǎng)。然而細(xì)胞虐我千百遍,我待細(xì)胞如初戀!科研人是不會(huì)這么被輕易打敗的。

公司主營(yíng)業(yè)務(wù):胎牛血清(HAKATA、HyClone、SERANA、NTC、Corning、BOVOGEN、PAA、PAN、SIGMA),無(wú)外泌體血清(SBI),ELISA試劑盒,細(xì)胞(400多種類通過(guò)STR鑒定),培養(yǎng)基(干粉、液體),雙抗,胰酶,CST,abcam,sigma等抗體。詳詢。

新買或惠贈(zèng)的細(xì)胞

1.新買的或惠贈(zèng)的細(xì)胞如何處理?

不管買的細(xì)胞、惠贈(zèng)的細(xì)胞,剛拿到手應(yīng)趕緊做這幾件事:檢測(cè)瓶子是否破裂;培養(yǎng)基是否漏出,是否渾濁;是否有支原體污染;迅速擴(kuò)增凍存。

2.能否使用與原先培養(yǎng)條件不同的培養(yǎng)基?

不能。每一細(xì)胞株均有其特定使用且已適應(yīng)的細(xì)胞培養(yǎng)基,若驟然使用和原先提供培養(yǎng)條件不同的培養(yǎng)基,細(xì)胞大都無(wú)法立即適應(yīng),造成細(xì)胞無(wú)法存活。

3.購(gòu)買的細(xì)胞死亡或存活率不佳可能原因?

常見(jiàn)原因可能有:培養(yǎng)基使用錯(cuò)誤或培養(yǎng)基品質(zhì)不佳;血清使用錯(cuò)誤或血清的品質(zhì)不佳;解凍過(guò)程錯(cuò)誤;冷凍細(xì)胞解凍后,加以洗滌細(xì)胞和離心;懸浮細(xì)胞誤認(rèn)為死細(xì)胞;培養(yǎng)溫度使用錯(cuò)誤;培養(yǎng)箱氣體濃度達(dá)不到要求;細(xì)胞置于 –80 ℃ 太久。

復(fù)蘇凍存的細(xì)胞

4.收到的冷凍管瓶身破裂,瓶蓋有裂紋,或瓶蓋脫落的原因?

冷凍管瓶蓋裂紋,或瓶身破裂,可能是因?yàn)椴僮髡邐A取冷凍管時(shí)用力不當(dāng),造成冷凍管裂損,建議使用止血鉗小心夾取。另冷凍管瓶蓋松動(dòng)或松脫,是因熱脹冷縮的物理現(xiàn)象,冷凍管有可能因此而造成細(xì)胞污染,故冷凍管于放入和取出液氮桶時(shí),均應(yīng)立刻將冷凍管再一次扭緊。

 

5.冷凍管應(yīng)如何解凍?

將冷凍管由液氮桶中取出解凍時(shí),必須注意安全,可佩戴防護(hù)眼鏡和手套預(yù)防冷凍管的爆裂。取出冷凍管后,須立即放入 37 ℃ 水浴環(huán)境中快速解凍,輕搖冷凍管使其在 1 分鐘內(nèi)全部融化,避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對(duì)細(xì)胞造成損害。并注意水面不可超過(guò)冷凍管蓋沿,否則易發(fā)生污染情形。

 

6.細(xì)胞冷凍管解凍培養(yǎng)時(shí),是否應(yīng)馬上去除 DMSO?

現(xiàn)在大多數(shù)實(shí)驗(yàn)室會(huì)在解凍細(xì)胞后加培養(yǎng)液將DMSO除去,但也有研究者認(rèn)為除少數(shù)特別注明對(duì) DMSO 敏感的細(xì)胞外,絕大部分細(xì)胞株(包括懸浮性細(xì)胞),在解凍之后,可直接放入含有 10~15 ml 新鮮培養(yǎng)基的培養(yǎng)角瓶中,待隔天再置換新鮮培養(yǎng)基以去除 DMSO 即可,如此可避免大部分解凍后細(xì)胞無(wú)法生長(zhǎng)或貼附的問(wèn)題。

 

細(xì)胞培養(yǎng)用液

7.如何正確選擇培養(yǎng)基種類?

引用幾款比較經(jīng)典的培養(yǎng)基舉例:

 

 

8.如何選用特殊細(xì)胞系培養(yǎng)基?

培養(yǎng)某一類型細(xì)胞沒(méi)有固定的培養(yǎng)條件。在 MEM 中培養(yǎng)的細(xì)胞,很可能在 DMEM 或 M199 中同樣很容易生長(zhǎng)。總之,shou選 MEM 做粘附細(xì)胞培養(yǎng),RPMI-1640 做懸浮細(xì)胞培養(yǎng)是一個(gè)好的開(kāi)始。

 

9.什么培養(yǎng)基中可以省去加酚紅?

酚紅在培養(yǎng)基中被用來(lái)作為 PH 值的指示劑:中性時(shí)為紅色,酸性時(shí)為黃色,堿性時(shí)為紫色。研究表明,酚紅可以模擬固醇類激素的作用(特別是雌激素)。為避免固醇類反應(yīng),培養(yǎng)細(xì)胞,尤其是哺乳類細(xì)胞時(shí),用不加酚紅的培養(yǎng)基。由于酚紅干擾檢測(cè),一些研究人員在做流式細(xì)胞檢測(cè)時(shí),不使用加有酚紅的培養(yǎng)基。

 

10.細(xì)胞培養(yǎng)基的配制和儲(chǔ)存應(yīng)該注意什么?

細(xì)胞培養(yǎng)基配好后,要先抽取少許放入培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)在37℃培養(yǎng)箱內(nèi)放置24~48h,已檢測(cè)培養(yǎng)液是否有污染,然后方可用于實(shí)驗(yàn)。配置培養(yǎng)基所需的血清要合格并且保持穩(wěn)定。一個(gè)批號(hào)試用效果良好后,就可一次購(gòu)入較多同一批號(hào)的血清,這樣實(shí)驗(yàn)條件穩(wěn)定,配液時(shí)調(diào)整pH值較容易。每次配液量以使用兩周左右的量為宜,一次配液不要太多,一是短期內(nèi)用不完造成營(yíng)養(yǎng)成分損失需要補(bǔ)充,二是量大易造成污染。

 

11.為何培養(yǎng)基保存于 4 ℃ 冰箱中,顏色會(huì)偏紫色?

培養(yǎng)基保存于 4 ℃ 冰箱中,培養(yǎng)基內(nèi)的 CO2 會(huì)逐漸溢出,造成培養(yǎng)基越來(lái)越偏堿性,而培養(yǎng)基中的酸堿指示劑 (通常為 phenol red) 的顏色也會(huì)隨堿性增加而更偏紫色。培養(yǎng)基偏堿的結(jié)果, 將造成細(xì)胞生長(zhǎng)停滯或死亡。若培養(yǎng)基偏堿時(shí),可以通入無(wú)菌過(guò)濾 CO2,以調(diào)整 pH 值。

 

12.什么情況下用到無(wú)血清培養(yǎng)基?

對(duì)于應(yīng)用培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行分離制備細(xì)胞生長(zhǎng)因子、單克隆抗體等應(yīng)該選擇無(wú)血清培養(yǎng)基。

 

13.如何選擇正確的血清種類?

 

 

14.可否使用與原先培養(yǎng)條件不同的血清種類?

不能。血清是細(xì)胞培養(yǎng)上一個(gè)極為重要的營(yíng)養(yǎng)來(lái)源,所以血清的種類和品質(zhì)對(duì)于細(xì)胞的生長(zhǎng)會(huì)產(chǎn)生極大的影響。來(lái)自不同物種的血清,在一些物質(zhì)或分子的量或內(nèi)容物上都有所不同,血清使用錯(cuò)誤常會(huì)造成細(xì)胞無(wú)法存活。

 

15.血清滅活是否必須?

這個(gè)問(wèn)題現(xiàn)在有爭(zhēng)議。有人主張價(jià)格不菲的血清中含有諸如生長(zhǎng)因子,維生素,氨基酸等珍貴物質(zhì),而將它們置于50℃以上的溫度長(zhǎng)達(dá)30分鐘的熱處理會(huì)對(duì)血清中的生長(zhǎng)因子,氨基酸等成分帶來(lái)的負(fù)面影響。盡管如此,在大多數(shù)實(shí)驗(yàn)室之中血清的熱滅活還是作為常規(guī)來(lái)執(zhí)行,尤其是在昆蟲細(xì)胞和胚胎干細(xì)胞培養(yǎng)中。

 

16.培養(yǎng)基中是否添加抗生素?

除特殊篩選系統(tǒng)中外,一般正常培養(yǎng)狀態(tài)下,培養(yǎng)基中不應(yīng)添加任何抗生素。

 

17.何時(shí)更換培養(yǎng)基?

視細(xì)胞生長(zhǎng)密度而定,或遵照細(xì)胞株基本數(shù)據(jù)上的更換時(shí)間,按時(shí)更換培養(yǎng)基即可。

 

細(xì)胞傳代

18.細(xì)胞傳代的方法都有哪些?

根據(jù)不同的細(xì)胞采取不同的方法。貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞用消化法傳代;部分貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞用直接吹打即可傳代;懸浮生長(zhǎng)的細(xì)胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打。

 

19.原代培養(yǎng)的傳代應(yīng)注意的問(wèn)題?

細(xì)胞沒(méi)有生長(zhǎng)到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前,不要急于傳代;原代培養(yǎng)時(shí)細(xì)胞多為混雜生長(zhǎng),不同的細(xì)胞有不同的消化時(shí)間,因此要根據(jù)需要注意觀察及時(shí)處理,并根據(jù)不同細(xì)胞對(duì)胰蛋白酶的耐受時(shí)間而分離和純化所需要的細(xì)胞;

吹打細(xì)胞時(shí)動(dòng)作要輕巧盡可能減少對(duì)細(xì)胞的損傷;傳代時(shí)細(xì)胞接種數(shù)量要多一些,使細(xì)胞能盡快適應(yīng)新環(huán)境而利于細(xì)胞生存和增值;隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養(yǎng)瓶。

 

20.使用胰蛋白酶時(shí)加入EDTA的目的?應(yīng)如何處理?

EDTA作用較胰蛋白酶緩和,主要作用在于能從組織生存環(huán)境中吸取Ca2+、Mg2+,這些離子是維持組織完整的重要因素。但EDTA單獨(dú)使用不能使細(xì)胞*分散,因而常與胰蛋白酶按不同比例混合使用,效果較好。常用比例為1:1或者2份EDTA:1份胰蛋白酶。EDTA的工作液濃度為0.02%,用不含Ca2+、Mg2+的BSS配置。如果使用EDTA,在終止消化前,需用緩沖液將消化液清除后才能加培養(yǎng)液。次開(kāi)瓶后應(yīng)立即少量分裝于無(wú)菌試管中,保存于 –20 ℃,避免反復(fù)冷凍解凍造成胰蛋白酶的活性降低,并可減少污染的機(jī)會(huì)。

 

21.欲將一般動(dòng)物細(xì)胞離心下來(lái),其離心速率應(yīng)為多少轉(zhuǎn)速?

欲回收動(dòng)物細(xì)胞,其離心速率一般為800~1000 rpm,5~10 分鐘,過(guò)高的轉(zhuǎn)速,將造成細(xì)胞死亡。

 

22.細(xì)胞的接種密度為何?

依照細(xì)胞株基本數(shù)據(jù)上的接種密度或稀釋分盤的比例接種即可。細(xì)胞數(shù)太少或稀釋的太多亦是造成細(xì)胞無(wú)法生長(zhǎng)的重要原因之一。

 

23.細(xì)胞交叉污染的可能原因?

多種細(xì)胞系進(jìn)行維持傳代操作時(shí),各細(xì)胞系所需的器材和溶液沒(méi)有嚴(yán)格分開(kāi),往往會(huì)使一種細(xì)胞被另一種細(xì)胞污染。

 

細(xì)胞凍存

24.冷凍培養(yǎng)基為什么要加DMSO?

因?yàn)榧?xì)胞在不加任何保護(hù)劑的情況下直接凍存時(shí),細(xì)胞內(nèi)外的水分都會(huì)很快形成冰晶,冰晶的形成將造成細(xì)胞損傷,還可引起細(xì)胞的的死亡。目前多采用甘油和DMSO做保護(hù)劑。這兩種細(xì)胞無(wú)明顯毒性,分子量小,溶解度大,易穿透細(xì)胞,可以使冰點(diǎn)下降,提高包膜對(duì)水的通透性。

 

25.DMSO 的等級(jí)和無(wú)菌過(guò)濾的方式為何?

冷凍保存使用的 DMSO 等級(jí),必須為 Tissue culture grade 的 DMSO,其本身即為無(wú)菌狀況,次開(kāi)瓶后應(yīng)立即少量分裝于無(wú)菌試管中,保存于 4 ℃,避免反復(fù)冷凍解凍造成 DMSO 的裂解而釋出有害物質(zhì),并可減少污染的機(jī)會(huì)。若要過(guò)濾 DMSO,則須使用耐 DMSO 的 Nylon 材質(zhì)濾膜。

 

26.欲冷凍保存時(shí),細(xì)胞冷凍管內(nèi)應(yīng)有多少細(xì)胞濃度?

冷凍管內(nèi)細(xì)胞數(shù)目一般為 1x106 cells/ml vial,融合瘤細(xì)胞則以 5x106 cells/ml vial 為宜。

 

27.冷凍保存細(xì)胞的方法?

冷凍保存方法一:冷凍管置于 4 ℃ 30~60 分鐘 →-20 ℃ 30 分鐘 → -80 ℃ 16~18 小時(shí)(或隔夜) → 液氮槽 vapor phase 長(zhǎng)期儲(chǔ)存。

冷凍保存方法二: 冷凍管置于已設(shè)定程序的可程序降溫機(jī)中每分鐘降 1~3 ℃ 至 –80 ℃ 以下, 再放入液氮槽 vapor phase 長(zhǎng)期儲(chǔ)存。–20 ℃ 不可超過(guò) 1 小時(shí),以防止冰晶過(guò)大,造成細(xì)胞大量死亡,亦可跳過(guò)此步驟直接放入 –80 ℃ 冰箱中,存活率稍微降低一些。

 

28.細(xì)胞凍存太多會(huì)不會(huì)浪費(fèi)?

每一種細(xì)胞系都應(yīng)有充足的凍存儲(chǔ)備,防止由于細(xì)胞污染等因素造成的細(xì)胞系的絕種,而且每一批次培養(yǎng)的細(xì)胞狀態(tài)都不同,應(yīng)該挑選幾個(gè)狀態(tài)較好的批次凍存保種。另外二倍體細(xì)胞等有限細(xì)胞系如果暫時(shí)不用凍存以免傳代太多,造成細(xì)胞衰老或者發(fā)生改變。

 

29.如何識(shí)別和預(yù)防常見(jiàn)的細(xì)胞污染?

細(xì)菌污染:細(xì)菌是一種原核細(xì)胞微生物,其大小以微米(μm)計(jì)。常見(jiàn)的污染細(xì)菌有革蘭氏陰性菌和大腸桿菌、假單胞菌等,革蘭氏陰性菌中白色葡萄球菌等比較常見(jiàn)。

一旦發(fā)生細(xì)菌污染較易發(fā)現(xiàn),多數(shù)情況下培養(yǎng)液短期內(nèi)顏色變黃,表明有大量酸性物質(zhì)產(chǎn)生,出現(xiàn)明顯混濁現(xiàn)象;有時(shí)靜置的培養(yǎng)液液體初看不混濁,但稍加振蕩,就有很多混濁物漂起。倒置顯微鏡下觀察,可見(jiàn)培養(yǎng)液中有大量圓球狀顆粒漂浮。必要時(shí)可取少量培養(yǎng)液涂片染色檢查以證實(shí)細(xì)菌種類;有的培養(yǎng)液改變不明顯而又疑有污染,可取出少量培養(yǎng)液用普通肉湯接種或用未加雙抗藥物的培養(yǎng)液接種,也可取10ml細(xì)胞懸液以100rpm離心5min,沉淀中加入無(wú)抗生素的培養(yǎng)液2ml,置于37℃培養(yǎng),24h可得結(jié)果。污染后細(xì)胞發(fā)生病理改變,胞內(nèi)顆粒增多、增粗,后變圓脫落死亡,造成試驗(yàn)失敗和細(xì)胞株(系)丟失。

 

看到這種,別猶豫了你的細(xì)胞被污染了,那么怎么辦呢,基本原則立馬扔掉,別擴(kuò)大污染,如果你的細(xì)胞真的十分寶貴,先用帶有雙抗的PBS反復(fù)沖洗幾遍,然后再培養(yǎng)液中加入硫酸慶大霉素、新霉素(50ug/ml)等,培養(yǎng)3天后換成帶有雙抗的培養(yǎng)液培養(yǎng)。

 

真菌污染:是細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程中常見(jiàn)的一種,尤其在梅雨季節(jié)進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)更易污染。污染培養(yǎng)細(xì)胞的多為煙曲霉、黑曲霉、毛霉菌、孢子霉、白念珠菌、酵母菌等。霉菌污染后多數(shù)在培養(yǎng)液中形成白色或淺黃色漂浮物。一般肉眼可見(jiàn),較易被發(fā)現(xiàn),短期內(nèi)培養(yǎng)液多不混濁,倒置顯微鏡下可見(jiàn)于細(xì)胞之間縱橫交錯(cuò)穿行的絲狀、管狀、及樹(shù)枝狀菌絲,并懸浮飄蕩在培養(yǎng)液中。很多菌絲在高倍鏡可見(jiàn)到有鏈狀排列的菌珠;念珠菌或酵母菌形態(tài)呈卵形,散在細(xì)胞周邊和細(xì)胞之間生長(zhǎng)。鏡下看時(shí),要將培養(yǎng)瓶用酒精棉球擦干凈,以防止與瓶外尤其瓶底外面生長(zhǎng)的菌絲相混淆。真菌污染后,細(xì)胞生長(zhǎng)變慢,但后由于營(yíng)養(yǎng)耗盡及毒性作用而使細(xì)胞脫落死亡。

 

真菌污染真的不建議處理,因?yàn)殒咦尤菀罪h散,可能這瓶沒(méi)9過(guò)來(lái),又?jǐn)U大了污染,建議預(yù)防為主,在培養(yǎng)箱的水中加入硫酸銅,就是藍(lán)色的那種東西。哎,如果你非救不可,可以采用兩性霉素B(0.25-2.5),三天后換液加入含PS的培養(yǎng)液。

 

支原體污染:支原體是一種大小介于細(xì)菌和病毒之間(小直徑0.2um)并獨(dú)立生活的微生物。約有1%可通過(guò)濾菌器。支原體無(wú)細(xì)胞壁形態(tài)呈高度多形性。可為圓形、絲狀或梨形。

支原體形態(tài)多變,在光境下不易看清內(nèi)部結(jié)構(gòu)。電鏡下觀察支原體膜為三層結(jié)構(gòu)。其中央有電干密度大的密集顆粒群或絲狀的中心束。支原體多吸附或散在于細(xì)胞表面和細(xì)胞之間。橫斷面與細(xì)胞微絨毛相似,但微絨毛電子密度比支原體小,且中央無(wú)顆粒群或中央束。

支原體污染細(xì)胞后,培養(yǎng)液可不發(fā)生混濁。多數(shù)情況下細(xì)胞病理變化輕微或不顯著,細(xì)微變化也可由于傳代、換液而緩解,因此易被忽視。但個(gè)別嚴(yán)重者,可致細(xì)胞增殖緩慢,甚至從培養(yǎng)器皿脫落。

 

如果懷疑細(xì)胞被支原體污染可使用支原體檢測(cè)試劑盒進(jìn)行檢測(cè),如果確定是支原體污染可以選擇支原體去除試劑進(jìn)行處理。

 

 

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